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α-淀粉酶(α-amylaseα-AL试剂盒说明书

For Research Use only

仅供研究用

货号:QYS-234029

分光光度法 50管/24样

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测

α-淀粉酶α-AL活性测定意义:

淀粉酶负责水解淀粉,包括 α-淀粉酶和 β-淀粉酶。α-淀粉酶(EC 3.2.1.1)可随机地作用于淀粉中的 α-1,4-糖苷键,生成葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、糊精等还原糖,同时使淀粉的粘度降低,因此又称为液化酶。

α-淀粉酶α-AL活性测定原理:

还原糖还原 3,5-二硝基水杨酸生成棕红色物质。β-淀粉酶不耐热,在 70℃钝化 15min,从而测定 α-淀粉酶活性。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、玻璃比色皿、研钵和蒸馏水。

试剂的组成和配制:

试剂一:25mL×1 瓶,常温保存,若有黄色晶体析出,需 90℃加热溶解后再用;

试剂二:20mL×1 瓶,4℃保存,若有沉淀析出,需 70℃加热溶解后再用。

粗酶液提取:

1.组织:称取 0.1~0.2g 样本(建议称取约 0.1g 样本),加 1 mL 蒸馏水匀浆;将匀浆倒入离心管中,在室温下放置提取 15min,每隔 5min 振荡 1 次,使其充分提取;3000g,25℃离心10min,吸取上清液并且加蒸馏水定容至 10 mL,摇匀,即为淀粉酶原液。

2.血清(浆):直接检测。

α-淀粉酶α-AL活性操作步骤和加样表(在 1.5mLEP 管中依次加入下列试剂)

1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长到 540 nm,蒸馏水调零。

2、 试剂一或试剂二 40℃预热 10min

3、测定步骤

试剂(μL)

对照管


测定管

α-淀粉酶原液

250


250


70℃水浴 15min 左右,冷却


蒸馏水

250



试剂二



250


在 40℃恒温水浴中准确保温 5min


试剂一

500


500

混匀,95℃水浴 5min,冷却, 540nm 处读取对照管和测定管吸光度,计算 ΔA=A 测定管-A 对照管。

α-淀粉酶α-AL活性计算:

1、标准条件下测定回归曲线为 y=3.7215x -0.1778; x 为标准品浓度(mg/mL),y 为吸光值。

2、α-淀粉酶活性

(1)按照样本质量计算

单位定义:每 g 组织每分钟催化产生 1mg 还原糖定义为 1 个酶活力单位。

α- 淀粉酶活性 (mg/min/g 鲜重 )=[(ΔA + 0.1778)÷3.7215×V  反总 ]÷(W×V  样 ÷V  样)÷T=1.075×(ΔA0.1778)÷W

(2)按照蛋白质含量计算

单位定义:每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1mg 还原糖定义为 1 个酶活性单位。

α-淀粉酶活性(mg/min/mg prot)= [(ΔA+0.1778)÷3.7215×V 反总]÷(V 样×Cpr)÷T=0.1075× (ΔA+0.1778) ÷Cpr

蛋白质含量需要另外测定建议选用本公司生产的 BCA 蛋白质浓度测定试剂盒(货号:QYS-237014)。

(3)血清(浆)样本中 α-淀粉酶活性计算单位定义:每 mL 血清(浆)每分钟催化产生 1mg 还原糖定义为 1 个酶活性单位。

α-淀粉酶活性(mg/min/mL)= [(ΔA+0.1778)÷3.7215×V 反总]÷V 样÷T=0.1075×(ΔA+0.1778)

V 反总:反应体系总体积,0.5mL;V 样:加入反应体系中样本体积,0.25 mL;V 样总:提取液总体积,10 mL; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;T:反应时间,5min

注:电子版试剂盒说明书仅供参考、具体请参考试剂盒纸质版说明书。

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